留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

IL-32,Cys-C和β2-MG在多发性骨髓瘤患者外周血中的表达

上一篇

下一篇

费晓莉, 章帆, 张开基, 等. IL-32,Cys-C和β2-MG在多发性骨髓瘤患者外周血中的表达[J]. 西南大学学报(自然科学版), 2021, 43(3): 30-35. doi: 10.13718/j.cnki.xdzk.2021.03.005
引用本文: 费晓莉, 章帆, 张开基, 等. IL-32,Cys-C和β2-MG在多发性骨髓瘤患者外周血中的表达[J]. 西南大学学报(自然科学版), 2021, 43(3): 30-35. doi: 10.13718/j.cnki.xdzk.2021.03.005
FEI Xiao-li, ZHANG Fan, ZHANG Kai-ji, et al. Expression of IL-32, Cys-C and β2-MG in Peripheral Blood of Multiple Myeloma Patients[J]. Journal of Southwest University Natural Science Edition, 2021, 43(3): 30-35. doi: 10.13718/j.cnki.xdzk.2021.03.005
Citation: FEI Xiao-li, ZHANG Fan, ZHANG Kai-ji, et al. Expression of IL-32, Cys-C and β2-MG in Peripheral Blood of Multiple Myeloma Patients[J]. Journal of Southwest University Natural Science Edition, 2021, 43(3): 30-35. doi: 10.13718/j.cnki.xdzk.2021.03.005

IL-32,Cys-C和β2-MG在多发性骨髓瘤患者外周血中的表达

  • 基金项目: 四川省科技厅科研课题(2020YJ0438);成都市卫计委立项课题(2016034)
详细信息
    作者简介:

    费晓莉,硕士,主治医师,主要从事多发性骨髓瘤相关研究 .

  • 中图分类号: R733.3

Expression of IL-32, Cys-C and β2-MG in Peripheral Blood of Multiple Myeloma Patients

  • 摘要:
    目的探讨多发性骨髓瘤(multiple myeloma,MM)患者血清白介素32(interleukin 32,IL-32)、胱抑素-C(Cys-C)和β2微球蛋白(β2-MG)水平变化与MM肿瘤负荷、疾病分期、近期疗效的关系.
    方法选择初诊MM患者62例(MM组)和28例健康体检者(对照组),MM组化疗前后、对照组体检当日采集空腹血,采用ELISA法检测IL-32水平,免疫比浊法测定Cys-C,β2-MG水平.
    结果MM组患者化疗前血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平均显著高于对照组(p<0.05). 不同国际分期系统(ISS)分期MM患者化疗前IL-32,Cys-C,β2-MG水平存在显著差异(p<0.05),Ⅲ期MM患者IL-32,Cys-C,β2-MG水平均明显高于Ⅰ期和Ⅱ期患者(p<0.05). 化疗前MM患者血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平显著高于化疗后(p<0.05). 化疗后评估疗效,部分缓解、疾病进展MM患者血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平均高于完全缓解MM患者(p<0.05). 将血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平与MM患者疾病分期、化疗后疗效进行Spearman相关性分析,提示MM患者ISS分期与血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平呈正相关(p<0.05),MM患者化疗后疗效与血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平呈负相关(p<0.05).
    结论IL-32可能在MM发生、发展中发挥作用;血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平变化与MM患者肿瘤负荷、疾病分期及近期疗效相关. 上述指标检测简单快速易操作,可以为临床诊疗工作提供有利的实验依据.
  • 加载中
  • 表 1  化疗前MM组与对照组血清IL-32,Cys-C,,β2-MG水平比较(x±s)

    组别 例数 IL-32/(ng·L-1) Cys-C/(mg·L-1) β2-MG/(mg·L-1)
    MM组 62 73.31±19.12* 2.72±0.88* 6.79±1.97*
    对照组 28 30.10 ± 5.87 0.76±0.16 2.58±0.35
    注:与对照组比较,*表示p<0.05水平差异具有统计学意义.
    下载: 导出CSV

    表 2  不同ISS分期初诊MM患者血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平比较(x±s)

    ISS分期 例数 IL-32/(ng·L-1) Cys-C/(mg·L-1) β2-MG/(mg·L-1)
    Ⅰ期 11 46.46±4.80 1.54±0.43 3.89±0.58
    Ⅱ期 19 65.46±7.28 2.06±0.41 5.83±0.661
    Ⅲ期 32 87.20±13.72*▲ 3.27±0.73*▲ 8.35±1.12*▲
    注:与Ⅱ期比较,*表示p<0.05水平差异具有统计学意义;与Ⅰ期比较,▲表示p<0.05水平差异具有统计学意义.
    下载: 导出CSV

    表 3  MM患者化疗前后血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平比较(x±s)

    组别 IL-32/(ng·L-1) Cys-C/(mg·L-1) β2-MG/(mg·L-1)
    治疗前 73.31±19.12* 2.72±0.88* 6.79±1.97*
    治疗后 36.81±8.25 1.95±0.77 4.28±1.36
    注:*表示p<0.05水平差异具有统计学意义.
    下载: 导出CSV

    表 4  不同疗效MM患者血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平比较(x±s)

    预后 例数 IL-32/(ng·L-1) Cys-C/(mg·L-1) β2-MG/(mg·L-1)
    完全缓解 17 32.02±5.35 1.46±0.64 3.00±0.88
    非常好的部分缓解 21 33.81±4.69 1.67±0.50 3.92±0.79▲
    部分缓解 20 40.42±7.16* 2.40±0.59* 5.15±0.64*
    疾病进展 4 54.93±6.35* 2.61±1.02* 8.19±1.01*
    注:部分缓解、疾病进展患者IL-32,Cys-C,β2-MG水平与完全缓解患者比较,*表示p<0.05水平差异具有统计学意义;非常好的部分缓解患者β2-MG水平与完全缓解患者比较,▲表示p<0.05水平差异具有统计学意义.
    下载: 导出CSV

    表 5  患者ISS分期与血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平相关性分析

    指标 相关系数 p
    IL-32 0.90 0
    Cys-C 0.73 0.01
    β2-MG 0.35 0.01
    下载: 导出CSV

    表 6  化疗后MM患者疗效与血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平相关性分析

    指标 相关系数 p
    IL-32 -0.36 0.01
    Cys-C -0.63 0
    β2-MG -0.79 0
    下载: 导出CSV
  • [1] KUMAR S K, RAJKUMAR V, KYLE R A, et al. Multiple myelomal[J]. Nat Rev Dis Primers, 2017, 20(7): 17043-17046.
    [2] HAMED R A, BAZARBACHI A H, MALARD F, et al. Current Status of Autologous Stem Cell Transplantation for Multiple Myeloma[J]. Blood Cancer Journal, 2019, 9(4): 44-48. doi: 10.1038/s41408-019-0205-9
    [3] JIMÉNEZ-SEGURA R, GRANELL M, GIRONELLA M, et al. Pomalidomide-dexamethasone for Treatment of Soft-tissue Plasmacytomas in Patients with Relapsed / Refractory Multiple Myeloma[J]. European Journal of Haematology, 2019, 102(5): 389-394. doi: 10.1111/ejh.13217
    [4] LAUBACH J, GARDERET L, MAHINDRA A, et al. Management of Relapsed Multiple Myeloma: Recommendations of the International Myeloma Working Group[J]. Leukemia, 2016, 30(5): 1005-1017. doi: 10.1038/leu.2015.356
    [5] SAFARI E, GHORGHANLU S, AHMADI-KHIAVI H, et al. Myeloid-derived Suppressor Cells and Tumor: Current Knowledge and Future Perspectives[J]. Journal of Cellular Physiology, 2019, 234(7): 9966-9981. doi: 10.1002/jcp.27923
    [6] HEINHUIS B, KOENDERS M I, VAN DEN BERG W B, et al. Interleukin 32 (IL-32) Contains a Typical α-Helix Bundle Structure that Resembles Focal Adhesion Targeting Region of Focal Adhesion Kinase-1[J]. Journal of Biological Chemistry, 2012, 287(8): 5733-5743. doi: 10.1074/jbc.M111.288290
    [7] doi: http://europepmc.org/articles/PMC4837279/ KHAWAR M B, ABBASI M H, SHEIKH N. IL-32: a Novel Pluripotent Inflammatory Interleukin, towards Gastric Inflammation, Gastric Cancer, and Chronic Rhino Sinusitis[J]. Mediators of Inflammation, 2016, 6(4): 8413768.
    [8] 邹美银, 章幼奕, 朱勇根, 等. 乙肝病毒相关肝细胞肝癌与IL-32表达相关性研究[J]. 中华肿瘤防治杂志, 2017, 24(12): 835-838, 844. doi: https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-QLZL201712008.htm
    [9] 杨正斌, 马川, 牟辉. 肺癌患者癌组织及癌旁组织中IL-32、Foxp3、CXCL8的表达水平及意义[J]. 临床肺科杂志, 2018, 23(9): 1578-1583. doi: 10.3969/j.issn.1009-6663.2018.09.007
    [10] 谷月丽, 肖喜春, 杨硕. 多发性骨髓瘤患者血浆白介素16水平的变化及临床意义[J]. 中国实验血液学杂志, 2017, 25(3): 823-826. doi: https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-XYSY201703035.htm
    [11] AVET-LOISEAU H, DURIE B G M, CAVO M, et al. Combining Fluorescent in Situ Hybridization Data with ISS Staging Improves Risk Assessment in Myeloma: an International Myeloma Working Group Collaborative Project[J]. Leukemia, 2013, 27(3): 711-717. doi: 10.1038/leu.2012.282
    [12] 吴晓颖, 施菊妹, 陶怡, 等. IGF-I、β2-MG和SF在多发性骨髓瘤患者中的诊断价值及其临床分期的关系[J]. 中国实验血液学杂志, 2018, 26(3): 802-806. doi: https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-XYSY201803031.htm
    [13] 金晓娜, 周宝珍, 张党锋. 多发性骨髓瘤患者VEGF、IL-17、β2-MG、IL-35表达水平及临床意义[J]. 中国实验血液学杂志, 2018, 26(1): 192-196. doi: https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-XYSY201801037.htm
    [14] 中国医师协会血液科医师分会, 中华医学会血液学分会, 中国医师协会多发性骨髓瘤专业委员会. 中国多发性骨髓瘤诊治指南(2015年修订)[J]. 中华内科杂志, 2015, 54(12): 1066-1070. doi: 10.3760/cma.j.issn.0578-1426.2015.12.020
    [15] VICTOR M, EVGENIY H, GERGANA T, et al. Serum Hepcidin Levels in Multiple Myeloma[J]. Clinical Laboratory, 2017, 63(7): 1273-1277.
    [16] KUMAR S, PAIVA B, ANDERSON KC, et al. International Myeloma Working Group consensus criteria for response and minimal residual disease assessment in multiple myeloma[J]. Lancet Oncol, 2016, 17(8): 328-346. doi: 10.1016/S1470-2045(16)30206-6
    [17] MCCARTHY P L, PALUMBO A. Maintenance Therapy for Multiple Myeloma[J]. Hematology/Oncology Clinics of North America, 2014, 28(5): 839-859. doi: 10.1016/j.hoc.2014.06.006
    [18] PERWEZ H S, HARRIS C C. Inflammation and Cancer: an Ancient Link with Novel Potentials[J]. International Journal of Cancer, 2007, 121(11): 2373-2380. doi: 10.1002/ijc.23173
    [19] CHEN Q, CARROLL H P, GADINA M. The Newest Interleukins: Recent Additions to the Ever-Growing Cytokine Family[J]. 2006, 74: 207-228.
    [20] MONIGATTI F, HEKKING B, STEEN H. Protein Sulfation Analysis——A Primer[J]. Biochimica et Biophysica Acta, 2006, 1764(12): 1904-1913. doi: 10.1016/j.bbapap.2006.07.002
    [21] JIA L, CLEAR A, LIU F T, et al. Extracellular HMGB1 Promotes Differentiation of Nurse-like Cells in Chronic Lymphocytic Leukemia[J]. Blood, 2014, 123(11): 1709-1719. doi: 10.1182/blood-2013-10-529610
    [22] doi: http://europepmc.org/articles/pmc4414001 YANG Y, WANG Z H, ZHOU Y M, et al. Dysregulation of Over-expressed IL-32 in Colorectal Cancer Induces Metastasis[J]. World Journal of Surgical Oncology, 2015, 13(4): 143-146.
    [23] PHAM T H, BAK Y, KWON T, et al. Interleukin-32θ Inhibits Tumor-promoting Effects of Macrophage-secreted CCL18 in Breast Cancer[J]. Cell Communication and Signaling, 2019, 17: 53-57. doi: 10.1186/s12964-019-0374-y
    [24] WANG G, NING F Y, WANG J H, et al. Expression of Interleukin-32 in Bone Marrow of Patients with Myeloma and Its Prognostic Significance[J]. World Journal of Clinical Cases, 2019, 7(24): 4234-4244. doi: 10.12998/wjcc.v7.i24.4234
    [25] ZAHOOR M, WESTHRIN M, AASS K R, et al. Hypoxia Promotes IL-32 Expression in Myeloma Cells, and High Expression is Associated with Poor Survival and Bone Loss[J]. Blood Advances, 2017, 1(27): 2656-2666. doi: 10.1182/bloodadvances.2017010801
    [26] GUPTA N, SHARMA A, SHARMA A. Emerging Biomarkers in Multiple Myeloma: a Review[J]. Clinica Chimica Acta, 2020, 503: 45-53. doi: 10.1016/j.cca.2019.12.026
    [27] CHAE H, RYU H, CHA K, et al. Neutrophil Gelatinase-Associated Lipocalin as a Biomarker of Renal Impairment in Patients with Multiple Myeloma[J]. Clinical Lymphoma Myeloma and Leukemia, 2015, 15(1): 35-40. doi: 10.1016/j.clml.2014.07.014
    [28] 宋斌, 陈雁, 张荣耀, 等. 血清CysC、Cr及LDH水平变化诊断多发性骨髓瘤早期肾损伤的价值[J]. 现代肿瘤医学, 2018, 26(21): 3471-3474. doi: 10.3969/j.issn.1672-4992.2018.21.031
    [29] 张蕴玉, 彭静, 宋志刚, 等. 胱抑素C与β2-微球蛋白在多发性骨髓瘤病情及近期疗效评估中的应用[J]. 国际肿瘤学杂志, 2019, 46(10): 590-594. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-422X.2019.10.004
  • 加载中
表( 6)
计量
  • 文章访问数:  791
  • HTML全文浏览数:  791
  • PDF下载数:  148
  • 施引文献:  0
出版历程
  • 收稿日期:  2020-05-12
  • 刊出日期:  2021-03-20

IL-32,Cys-C和β2-MG在多发性骨髓瘤患者外周血中的表达

    作者简介: 费晓莉,硕士,主治医师,主要从事多发性骨髓瘤相关研究
  • 1. 成都市第一人民医院 血液内科,成都 610016
  • 2. 成都市第一人民医院 检验科,成都 610016
基金项目:  四川省科技厅科研课题(2020YJ0438);成都市卫计委立项课题(2016034)

摘要: 

目的探讨多发性骨髓瘤(multiple myeloma,MM)患者血清白介素32(interleukin 32,IL-32)、胱抑素-C(Cys-C)和β2微球蛋白(β2-MG)水平变化与MM肿瘤负荷、疾病分期、近期疗效的关系.
方法选择初诊MM患者62例(MM组)和28例健康体检者(对照组),MM组化疗前后、对照组体检当日采集空腹血,采用ELISA法检测IL-32水平,免疫比浊法测定Cys-C,β2-MG水平.
结果MM组患者化疗前血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平均显著高于对照组(p<0.05). 不同国际分期系统(ISS)分期MM患者化疗前IL-32,Cys-C,β2-MG水平存在显著差异(p<0.05),Ⅲ期MM患者IL-32,Cys-C,β2-MG水平均明显高于Ⅰ期和Ⅱ期患者(p<0.05). 化疗前MM患者血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平显著高于化疗后(p<0.05). 化疗后评估疗效,部分缓解、疾病进展MM患者血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平均高于完全缓解MM患者(p<0.05). 将血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平与MM患者疾病分期、化疗后疗效进行Spearman相关性分析,提示MM患者ISS分期与血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平呈正相关(p<0.05),MM患者化疗后疗效与血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平呈负相关(p<0.05).
结论IL-32可能在MM发生、发展中发挥作用;血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平变化与MM患者肿瘤负荷、疾病分期及近期疗效相关. 上述指标检测简单快速易操作,可以为临床诊疗工作提供有利的实验依据.

English Abstract

  • 多发性骨髓瘤(Multiple myeloma,MM)是一种克隆性浆细胞异常增殖的恶性疾病,发病率仅次于淋巴瘤,约占恶性肿瘤的1%[1]. 目前,各种治疗方案(如免疫疗法、自体造血干细胞移植、靶向药物等)层出不穷为MM患者提供了更多的治疗选择[2-3]. 尽管如此,MM仍无法达到完全治愈,绝大部分患者仍会因疾病进展、复发,最终导致治疗失败[4]. 大量研究证实炎症微环境与肿瘤的发生发展密切相关,炎症微环境中多种免疫细胞分泌大量细胞因子、趋化因子、生长因子等可以促进肿瘤细胞生长和增殖,从而导致肿瘤性疾病进展恶化[5]. 白介素32(interleukin 32,IL-32)呈现出促炎症因子的特性,能够促进MIP-2,TNF-α,IL-6等多种炎症因子分泌增加,从而导致"级联放大效应"[6-7]. 目前,已有文献报道IL-32在多种实体肿瘤如肝癌、肺癌、结肠癌等中呈高表达,被认为是这些疾病的独立不良预后因素[8-9],但在多发性骨髓瘤中相关研究甚少. 胱抑素-C(Cys-C)是半胱氨酸蛋白酶抑制家族成员,可直接或间接参与肿瘤生长、血管生成、肿瘤细胞转移等过程,有研究表明Cys-C与肿瘤负荷、疾病发展有关[10-11]. 生理代谢活跃的肿瘤细胞可分泌大量β2微球蛋白(β2-MG),β2-MG能够反映MM细胞增殖活性,研究表明它与MM肿瘤负荷、疾病进展有关[12-13]. 本研究通过比较MM患者不同ISS分期,以及化疗前后血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平变化,探讨其与MM发生、发展的关系,旨在为临床工作寻找简单易操作,并且可靠的MM肿瘤负荷、病情分期、近期疗效的评价指标.

  • 将2015年1月-2019年7月期间,成都市第一人民医院收治的初诊MM患者62例(MM组)纳入本研究. 其中男性38例、女性24例;年龄36~76岁,中位年龄59岁;IgG型34例,IgA型17例,IgD型2例,轻链型9例,所有病例诊断均符合《2017年中国多发性骨髓瘤诊治指南》的诊断标准[14]. 依据国际分期系统(ISS)进行分期[15],Ⅰ期11例、Ⅱ期19例、Ⅲ期32例. 纳入MM组患者排除慢性阻塞性肺病、乙型病毒性肝炎、类风湿关节炎等慢性炎性疾病,化疗前或化疗过程中出现感染者. MM组62例患者接受化疗,其中43例接受BD方案化疗:硼替佐米1.3 mg/m2,第1,4,8,11 d;地塞米松20 mg/d,第1~2,4~5,8~9,11~12 d,21 d为1个疗程. 另19例MM患者接受VAD方案化疗:长春新碱0.5 mg/d,第1~4 d;阿霉素10 mg/d,第1~4 d;地塞米松40 mg/d,第1~4,9~12,17~20 d,28 d为1个疗程. 经4个疗程化疗后进行疗效评估,参考2016年国际骨髓瘤工作组(IMWG)疗效标准[16],其中达完全缓解患者(CR)17例,非常好的部分缓解患者(VGPR)21例,部分缓解患者(PR)20例,疾病进展患者(PD)4例. 此外,选择年龄、性别相匹配的健康体检者28例(对照组),男性15例、女性13例,年龄38~72岁,中位年龄54岁. 本研究通过成都市第一人民医院医学伦理委员会批准,受试者签署同意书.

  • MM组患者采集标本时间为化疗前和化疗4个疗程后,对照组为体检当日采集. 分别采集两管空腹静脉外周血各5 mL(肝素抗凝),其中一管离心提取上层血清置于1.5 mL Eppendorf管中,-70 ℃保存用于IL-32水平测定. 另一管外周血置于全自动生化检测仪中(美国贝克曼库尔特公司)当日完成Cys-C,β2-MG水平测定.

  • 采用ELISA法检测血清IL-32水平(上海酶联有限公司试剂盒),严格按照试剂盒说明书进行操作,操作步骤为:对应板孔中加入100 μL标准品工作液或血清标本,37 ℃孵育90 min,弃掉板内液体后,立即加入100 μL生物素化抗体工作液,37 ℃孵育60 min,弃掉板内液体,洗板3次,每孔加入100 μL HRP酶结合物工作液,37 ℃孵育30 min,弃掉板内液体,洗板5次,每孔加入90 μL底物溶液,37 ℃孵育约15 min,每孔加入50 μL终止液,最后在450 nm波长下读取OD值. 使用全自动生化检测仪免疫比浊法测定血清Cys-C,β2-MG水平.

  • 所有数据均用SPSS 20.0软件处理. 所有数据呈正态分布,计量资料以x±s表示,两组间均数比较采用t检验,3组及3组以上组间均数比较采用one-way ANOVA,相关性分析采用Spearman进行分析. p<0.05为差异具有统计学意义.

  • MM组化疗前血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平明显高于正常对照组,差异具有统计学意义(p<0.05)(表 1).

  • Ⅲ期MM患者血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平高于Ⅰ期和Ⅱ期患者,差异具有统计学意义(p<0.05),Ⅱ期患者血清IL-32,β2-MG水平高于Ⅰ期患者,差异具有统计学意义(p<0.05),血清Cys-C水平差异无统计学意义(p>0.05)(表 2).

  • 化疗前MM患者血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平显著高于化疗后,差异具有统计学意义(p<0.05)(表 3).

  • 部分缓解、疾病进展MM患者血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平均高于完全缓解患者(p<0.05). 非常好的部分缓解患者血清β2-MG水平高于完全缓解患者(p<0.05),IL-32,Cys-C水平与完全缓解患者差异无统计学意义(p>0.05)(表 4).

  • 采用Spearman进行相关性分析,发现初诊MM患者ISS分期与血清中IL-32,Cys-C,β2-MG水平均呈正相关(p<0.05),患者疾病分期越靠后,血清中IL-32,Cys-C,β2-MG水平越高. MM患者经化疗后疗效评估,疗效与血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平均呈负相关(p<0.05),患者预后越差,血清中IL-32,Cys-C,β2-MG水平越高(表 5表 6).

  • 多发性骨髓瘤(Multiple myeloma,MM)是一种克隆性浆细胞异常增殖的恶性疾病,大量单克隆免疫球蛋白产生,导致终末器官损害,老年患者较多[17]. 炎症微环境与肿瘤发生、发展密切相关,在炎症微环境中的免疫细胞分泌大量细胞因子、趋化因子、生长因子,从而促进肿瘤细胞迅速生长和增殖,最终导致肿瘤进展恶化[5]. 约25%的肿瘤性疾病是由慢性炎症进展而成,在炎性微环境中炎性细胞作为重要的支持细胞保护并促进其生长,同时许多肿瘤从慢性炎症的病灶处演变而来,因此炎症和肿瘤有着紧密的联系[18]. IL-32最早在自然杀伤细胞(NK)细胞中发现,最初命名为NK-4 [19],主要由病原体和促炎细胞因子诱导产生,Monigatti等[20]首次报道了IL-32的促炎症因子特性. IL-32呈现促炎症因子特性,能够促进MIP-2,TNF-α,IL-6,IL-1β等多种炎症因子分泌增加,并起到"级联放大效应". 目前,已有大量文献报道IL-32在多种肿瘤如肝癌[8]、肺癌[9]、慢性淋巴细胞白血病[21]、结肠癌[22]、乳腺癌[23]、骨肉瘤等中高表达,被认为是这些肿瘤性疾病的独立不良预后因素.

    本研究发现MM患者体内高表达IL-32,且经过化疗后血清中IL-32水平明显降低. 采用ELISA法检测初诊未治MM组和对照组血清IL-32水平,结果显示初诊未治MM患者化疗前血清IL-32水平明显高于正常对照组,且ISS分期与IL-32水平呈正相关,提示血清IL-32水平可以反映MM患者肿瘤负荷以及疾病的严重程度,与Wang等[24]、Zahoor等[25]的研究结果一致. 本研究还分别检测了MM组化疗前后IL-32水平变化情况,发现化疗后IL-32水平显著降低,化疗后进行疗效评估,得出化疗后完全缓解MM患者IL-32水平较部分缓解、疾病进展患者明显降低,提示血清IL-32水平可以作为临床监测评估MM患者化疗疗效的指标.

    单一指标的检测很难准确反应疾病病理生理学行为方面的复杂性,因此联合检测现已成为共识. β2-MG是由机体有核细胞合成和分泌的分子量较低的蛋白,生理代谢过程活跃的肿瘤细胞可分泌大量β2-MG,已有大量研究证实它能够反映MM细胞的增殖活性,是MM肿瘤负荷、疾病分期、预后评估公认的可靠指标[26],也是公认的MM国际分期系统(ISS)的重要指标之一. Cys-C是半胱氨酸蛋白酶抑制家族成员,能够抑制细胞内外半胱氨酸蛋白酶,直接或间接参与肿瘤生长、血管生成、肿瘤细胞转移等过程[27-28]. 因此,本研究与IL-32同期监测了β2-MG,Cys-C血清水平变化,发现血清β2-MG,Cys-C水平变化趋势与IL-32水平变化一致,并进行了相关性分析,发现血清IL-32,Cys-C,β2-MG水平与MM患者肿瘤负荷、疾病分期呈正相关,与化疗后疗效呈负相关,提示IL-32,Cys-C和β2-MG一样,在评估MM肿瘤负荷、疾病分期和化疗疗效中有可靠的临床应用价值,这与张蕴玉等[29]、Gu等[10]的研究结果一致.

    IL-32可能在MM发生、发展中发挥作用,血清IL-32,β2-MG和Cys-C水平不仅能够作为MM肿瘤负荷、疾病分期、进展程度的评价参考指标,还能够预估患者的临床近期疗效,服务于临床工作. 上述指标检测简单、快速、易操作,易于被临床采纳应用.

参考文献 (29)

目录

/

返回文章
返回